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      菌落總數的檢驗方法

      發布時間:

      2022-12-27

      作者:

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      菌落總數的檢驗方法
       
      菌落總數介紹:
      菌落是指細菌在固體培養基上生長繁殖而形成的能被肉眼識別的生長物,它是由數以萬計相同的細菌集合而成.當樣品被稀釋到一定程度,與培養基混合,在一定培養條件下,每個能夠生長繁殖的細菌細胞都可以在平板上形成一個可見的菌落.
       
      菌落總數就是指在一定條件下(如需氧情況、營養條件、pH、培養溫度和時間等)每克(每毫升)檢樣所生長出來的細菌菌落總數.按國家標準方法規定,即在需氧情況下,37攝氏度培養48h,能在普通營養瓊脂平板上生長的細菌菌落總數,所以厭氧或微需氧菌、有特殊營養要求的以及非嗜中溫的細菌,由于現有條件不能滿足其生理需求,故難以繁殖生長.因此菌落總數并不表示實際中的所有細菌總數,菌落總數并不能區分其中細菌的種類,所以有時被稱為雜菌數,需氧菌數等.
       
      菌落總數測定是用來判定食品被細菌污染的程度及衛生質量,它反映食品在生產過程中是否符合衛生要求,以便對被檢樣品做出適當的衛生學評價.菌落總數的多少在一定程度上標志著食品衛生質量的優劣. 
       
      檢驗方法
       
      菌落總數的測定,一般將被檢樣品制成幾個不同的10倍遞增稀釋液,然后從每個稀釋液中分別取出1毫升置于滅菌平皿中與營養瓊脂培養基混合,在一定溫度下,培養一定時間后(一般為48小時),記錄每個平皿中形成的菌落數量,依據稀釋倍數,計算出每克(或每毫升)原始樣品中所含細菌菌落總數.
       
      基本操作一般包括:樣品的稀釋,傾注平皿,培養48小時,計數報告.
       
      國內外菌落總數測定方法基本一致,從檢樣處理、稀釋、傾注平皿到計數報告無何明顯不同,只是在某些具體要求方面稍有差別,如有的國家在樣品稀釋和傾注培養進,對吸管內液體的流速,稀釋液的振蕩幅度、時間和次數以及放置時間等均作了比較具體的規定.
       
      說明
       
      (一)樣品的處理和稀釋:
       
      操作方法:以無菌操作取檢樣25g(或25毫升),放于225毫升滅菌生理鹽水或其他稀釋液的滅菌玻璃瓶內(瓶內預置適當數量的玻璃珠)或滅菌乳缽內,經充分振要或研磨制成1:10的均勻稀釋液.
       
      固體檢樣在加入稀釋液后,最好置滅菌均質器中以8000至10000r/分鐘的速度處理1分鐘,制成1:10的均勻稀釋液.
       
      用1毫升滅菌吸管吸取1:10稀釋液1毫升,沿管壁徐徐注入含有9毫升滅菌生理鹽水或其他稀釋液的試管內,振搖試管混合均勻,制成1:100的稀釋液.
       
      另取1毫升滅菌吸管,按上項操作順序,制10倍遞增稀釋液,如此每遞增稀釋一次即換用1支1毫升滅菌吸管.
       
      無菌操作:操作中必須有“無菌操作”的概念,所用玻璃器皿必須是完全滅菌的,不得殘留有細菌或抑菌物質.所用剪刀、鑷子等器具也必須進行消毒處理.樣品如果有包裝,應用75%乙醇在包裝開口處擦拭后取樣.
       
      操作應當在超凈工作臺或經過消毒處理的無菌室進行.瓊脂平板在工作臺暴露15分鐘,每個平板不得超過15個菌落.
       
      采樣的代表性:如系固體樣品,取樣時不應集中一點,宜多采幾個部位.固體樣品必須經過均質或研磨,液體樣品須經過振搖,以獲得均勻稀釋液.
       
      樣品稀釋誤差:為減少樣品稀釋誤差,在連續遞次稀釋時,每一稀釋液應充分振搖,使其均勻,同時每一稀釋度應更換一支吸管.
       
      在進行連續稀釋時,應將吸管內液體沿管壁流入,勿使吸管尖端伸入稀釋液內,以免吸管外部粘附的檢液溶于其內.
       
      為減少稀釋誤差,SN標準采用取10毫升稀釋液,注入90毫升緩沖液中.
       
      稀釋液:樣品稀釋液主要是滅菌生理鹽水,有的采用磷酸鹽緩沖液(或0.1%蛋白胨水),后者對食品已受損傷的細菌細胞有一定的保護作用.如對含鹽量較高的食品(如醬油)進行稀釋,可以采用滅菌蒸餾水.
       
      (二)傾注培養
       
      操作方法:根據標準要求或對污染情況的估計,選擇2至3個適宜稀釋度,分別在制10倍遞增稀釋的同時,以吸取該稀釋度的吸管移取1毫升稀釋液于滅菌平皿中,每個稀釋度做兩個平皿.
       
      將涼至46攝氏度營養瓊脂培養基注入平皿約15毫升,并轉動平皿,混合均勻.同時將營養瓊脂培養基傾入加有1毫升稀釋液(不含樣品)的滅菌平皿內作空白對照.
       
      待瓊脂凝固后,翻轉平板,置36±1攝氏度溫箱內培養48±2h,取出計算平板內菌落數目,乘以稀釋倍數,即得每克(每毫升)樣品所含菌落總數.
       
      傾注用培養基應在46攝氏度水浴內保溫,溫度過高會影響細菌生長,過低瓊脂易于凝因而不能與菌液充分混勻.如無水浴,應以皮膚感受較熱而不燙為宜.
       
      傾注培養基的量規定不一,從12至20毫升不等,一般以15毫升較為適宜,平板過厚可影響觀察,太薄又易于干裂.傾注時,培基底部如有沉淀物,應將底部棄去,以免與菌落混淆而影響計數觀察.
       
      為使菌落能在平板上均勻分布,檢液加入平皿后,應盡快傾注培養基并旋轉混勻,可正反兩個方向旋轉,檢樣從開始稀釋到傾注最后一個平皿所用時間不宜超過20分鐘,以防止細菌有所死亡或繁殖..
       
      培養溫度一般為37攝氏度(水產品的培養溫度,由于其生活環境水溫較低,故多采用30攝氏度).培養時間一般為48h,有些方法只要求24h的培養即可計數.培養箱應保持一定的濕度,瓊脂平板培養48h后,培養基失重不應超過15%.
       
      為了避免食品中的微小顆粒或培基中的雜質與細菌菌落發生混淆,不易分辨,可同時作一稀釋液與瓊脂培基混合的平板,不經培養,而于4攝氏度環境中放置,以便計數時作對照觀察.
       
      在某些場合,為了防止食品顆粒與菌落混淆不清,可在營養瓊脂中加入氯化三苯四氮唑(TTC),培養后菌落呈紅色,易于分別.
       
      (三)計數和報告
       
      操作方法:培養到時間后,計數每個平板上的菌落數.可用肉眼觀察,必要時用放大鏡檢查,以防遺漏.在記下各平板的菌落總數后,求出同稀釋度的各平板平均菌落數,計算處原始樣品中每克(或每毫升)中的菌落數,進行報告.
       
      到達規定培養時間,應立即計數.如果不能立即計數,應將平板放置于0-4攝氏度,但不得超過24h.
       
      計數時應選取菌落數在30至300之間的平板(SN標準要求為25至250個菌落),若有二個稀釋度均在30至300之間時,按國家標準方法要求應以二者比值決定,比值小于或等于2取平均數,比值大于2則其較小數字(有的規定不考慮其比值大小,均以平均數報告).
       
      若所有稀釋度均不在計數區間.如均大于300,則取最高稀釋度的平均菌落數乘以稀釋倍數報告之.如均小于30,則以最低稀釋度的平均菌落數乘稀釋倍數報告之.如菌落數有的大于300,有的又小于30,但均不在30至300之間,則應以最接近300或30的平均菌落數乘以稀釋倍數報告之.如所有稀釋度均無菌落生長,則應按小于1乘以最低稀釋倍數報告之.有的規定對上述幾種情況計算出的菌落數按估算值報告.
       
      不同稀釋度的菌落數應與稀釋倍數成反比(同一稀釋度的二個平板的菌落數應基本接近),即稀釋倍數愈高菌落數愈少,稀釋倍數愈低菌落數愈多.如出現逆反現象,則應視為檢驗中的差錯(有的食品有時可能出現逆反現象,如酸性飲料等),不應作為檢樣計數報告的依據.
       
      當平板上有鏈狀菌落生長時,如呈鏈狀生長的菌落之間無任何明顯界限,則應作為一個菌落計,如存在有幾條不同來源的鏈,則每條鏈均應按一個菌落計算,不要把鏈上生長的每一個菌落分開計數.如有片狀菌落生長,該平板一般不宜采用,如片狀菌落不到平板一半,而另一半又分布均勻,則可以半個平板的菌落數乘2代表全平板的菌落數.
       
      當計數平板內的菌落數過多(即所有稀釋度均大于300時),但分布很均勻,可取平板的一半或1/4計數.再乘以相應稀釋倍數作為該平板的菌落數.
       
      菌落數的報告,按國家標準方法規定菌落數在1至100時,按實有數字報告,如大于100時,則報告前面兩位有效數字,第三位數按四舍五入計算.固體檢樣以克(g)為單位報告,液體檢樣以毫升(毫升)為單位報告,表面涂擦則以平方厘米(cm2)報告.
       
      更多技術資料:日水生物培養基
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